TẠP CHÍ CÔNG THƯƠNG ĐIỆN TỬ - CƠ QUAN THÔNG TIN LÝ LUẬN CỦA BỘ CÔNG THƯƠNG
Tạp chí Công Thương - Các kết quả nghiên cứu
Quay về Tạp chí Công Thương
e-ISSN 3093-3994
ISSN 0866-7756
DOI: 10.62831
Đăng nhập
Số phát hành: Số 17 - Tháng 6 - 2026 Hóa học - Công nghệ thực phẩm

Đánh giá thành phần hóa học dịch chiết dung môi eutectic sâu (DES) từ vỏ măng cụt (Garcinia mangostana L.) bằng phương pháp LC-MS Q-ToF

Xuất bản: tháng 7 20, 2026

Tóm tắt

Nghiên cứu này đánh giá thành phần hóa học của dịch chiết được từ phương pháp trích xuất xanh từ vỏ măng cụt (Garcinia mangostana L.) bằng phương pháp sắc ký phương pháp LC-MS Q-ToF và so sánh với dịch chiết thu được bằng phương pháp chiết suất dung môi thông thường, đồng thời tính xanh của các phương pháp được đánh giá bằng các công cụ Green Extraction Tree (GET), AGREEprep và Sample Preparation Metric of Sustainability (SPMS). Kết quả LC-MS Q-ToF cho thấy, dịch chiết DES và ethanol đều chứa nhiều nhóm hợp chất có hoạt tính sinh học như phenolic, polyphenol, flavonoid, coumarin, triterpenoid và một số nhóm chất khác. Kết quả đánh giá tính xanh cho thấy, phương pháp DES đạt điểm cao hơn theo cả 3 công cụ, với GET 24/28, AGREEprep 0,69 và SPMS 7,58. Điều này cho thấy, DES là hệ dung môi có tiềm năng thay thế dung môi hữu cơ truyền thống trong trích ly các hợp chất hoạt tính từ phụ phẩm vỏ măng cụt, góp phần nâng cao giá trị phụ phẩm nông nghiệp và định hướng phát triển công nghệ trích ly xanh, bền vững.

Từ khóa
vỏ măng cụt dung môi eutectic sâu (DES) phụ phẩm nông nghiệp thành phần hóa học

Tài liệu tham khảo

1.
Braga T. M., Rocha L., Chung T. Y., Oliveira R. F. et al. (2020). Biological Activities of Gedunin-A Limonoid from the Meliaceae Family. Molecules (Basel, Switzerland), 25(3). https://doi.org/10.3390/MOLECULES25030493
DOI: doi.org/10.3390/molecules25030493
2.
Chemat F., Vian M. A., & Cravotto G. (2012). Green extraction of natural products: concept and principles. International Journal of Molecular Sciences, 13(7), 8615-8627. https://doi.org/10.3390/IJMS13078615.
DOI: doi.org/10.3390/ijms13078615
3.
Chen Y. F., Wu K. J., Siao L. R., & Tsai H. Y. (2022). Trilinolein, a Natural Triacylglycerol, Protects Cerebral Ischemia through Inhibition of Neuronal Apoptosis and Ameliorates Intimal Hyperplasia via Attenuation of Migration and Modulation of Matrix Metalloproteinase-2 and RAS/MEK/ERK Signaling Pathway. International Journal of Molecular Sciences, 23(21). https://doi.org/10.3390/IJMS232112820.
DOI: doi.org/10.3390/ijms232112820
4.
Cheok C. Y., Chin N. L., Yusof Y. A., Talib R. A., & Law C. L. (2013). Optimization of total monomeric anthocyanin (TMA) and total phenolic content (TPC) extractions from mangosteen (Garcinia mangostana Linn.) hull using ultrasonic treatments. Industrial Crops and Products, 50, 1-7. https://doi.org/10.1016/J.INDCROP.2013.07.024.
DOI: doi.org/10.1016/j.indcrop.2013.07.024
5.
Fan L., Fan W., Hui Z., Zhang Q., Tang J., Wang Z., & Yang L. (2025). Green Extraction Tree: A Novel Tool to Greenness Metric for Green Extraction of Natural Products. ACS Omega, 10(43), 51531-51544. https://doi.org/10.1021/ACSOMEGA.5C07167.
DOI: doi.org/10.1021/acsomega.5c07167
6.
González-Martín R., Gutiérrez-Serpa A., Pino V., & Sajid M. (2023). A tool to assess analytical sample preparation procedures: Sample preparation metric of sustainability. Journal of Chromatography A, 1707, 464291. https://doi.org/10.1016/J.CHROMA.2023.464291.
DOI: doi.org/10.1016/j.chroma.2023.464291
7.
Hano C. F., Dinkova-Kostova A. T., Davin L. B., Cort J. R., & Lewi N. G. (2021). Editorial: Lignans: Insights Into Their Biosynthesis, Metabolic Engineering, Analytical Methods and Health Benefits. Frontiers in Plant Science, 11, 630327. https://doi.org/10.3389/FPLS.2020.630327.
DOI: doi.org/10.3389/fpls.2020.630327
8.
Hao B., Yang Z., Liu H., Liu Y., & Wang S. (2024). Advances in Flavonoid Research: Sources, Biological Activities, and Developmental Prospectives. Current Issues in Molecular Biology, 46(4), 2884-2925. https://doi.org/10.3390/CIMB46040181.
DOI: doi.org/10.3390/cimb46040181
9.
Lai M., Chen H., Liu X. et al. (2024). Exploration of phenolic profile from mangosteen (Garcinia mangostana L.) pericarp and their contribution to inhibitory effects on α-amylase and α-glucosidase. LWT, 203, 116350. https://doi.org/10.1016/J.LWT.2024.116350.
DOI: doi.org/10.1016/j.lwt.2024.116350
10.
Milan E. P., Bertolo M. R. V., Martins V. C. A. et al. (2022). Effects of Mangosteen Peel Phenolic Compounds on Tilapia Skin Collagen-Based Mineralized Scaffold Properties. ACS Omega, 7(38), 34022. https://doi.org/10.1021/ACSOMEGA.2C03266.
DOI: doi.org/10.1021/acsomega.2c03266
11.
Miyake Y., Minato K., Fukumoto S., Yamamoto K., Oyaito T., Kawakishi S., & Osawa T. (2003). New Potent Antioxidative Hydroxyavanones Produced with Aspergillus saitoi from Flavanone Glycoside in Citrus Fruit. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 67(7).
12.
Munteanu I. G., & Apetrei C. (2022). Assessment of the Antioxidant Activity of Catechin in Nutraceuticals: Comparison between a Newly Developed Electrochemical Method and Spectrophotometric Methods. International Journal of Molecular Sciences, 23(15), 8110. https://doi.org/10.3390/IJMS23158110/S1.
DOI: doi.org/10.3390/ijms23158110/s1
13.
Nam W., Kim S. P., Nam S. H., Friedman M., & Sabatier J. M. (2017). Structure-Antioxidative and Anti-Inflammatory Activity Relationships of Purpurin and Related Anthraquinones in Chemical and Cell Assays. Molecules : A Journal of Synthetic Chemistry and Natural Product Chemistry, 22(2), 265. https://doi.org/10.3390/MOLECULES22020265
DOI: doi.org/10.3390/molecules22020265
14.
Pena-Pereira, F., Tobiszewski, M., Wojnowski, W., & Psillakis, E. (2022). A Tutorial on AGREEprep an Analytical Greenness Metric for Sample Preparation. Advances in Sample Preparation, 3, 100025. https://doi.org/10.1016/J.SAMPRE.2022.100025.
DOI: doi.org/10.1016/j.sampre.2022.100025
15.
Stefanachi A., Leonetti F., Pisani L., Catto M., & Carotti A. (2018). Coumarin: A Natural, Privileged and Versatile Scaffold for Bioactive Compounds. Molecules (Basel, Switzerland), 23(2). https://doi.org/10.3390/MOLECULES23020250.
DOI: doi.org/10.3390/molecules23020250
16.
Wang Y., Liu F., Liang Z., Peng L., Wang B., Yu J., Su Y., & Ma C. (2017). Homoisoflavonoids and the Antioxidant Activity of Ophiopogon japonicus Root. Iranian Journal of Pharmaceutical Research : IJPR, 16(1), 357. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5423261/.

Cùng chuyên mục

Bài viết liên quan

Các bài trong chuyên đề «Hóa học - Công nghệ thực phẩm».

Xem thêm bài viết