Ảnh hưởng của phương pháp tiền xử lý đến naringin và các hợp chất có hoạt tính sinh học trong hạt quả tắc (Fortunella japonica)

Tóm tắt

Hạt quả tắc (Fortunella japonica) là nguồn nguyên liệu có giá trị cao, đặc biệt giàu các hợp chất có hoạt tính sinh học. Tuy nhiên, điểm hạn chế lớn nhất là vị đắng đặc trưng nên hạt tắc vẫn chưa được khai thác hiệu quả trong chế biến thực phẩm. Do đó, việc áp dụng các phương pháp tiền xử lý thích hợp nhằm giảm hợp chất gây đắng naringin và hạn chế tổn thất các hợp chất có hoạt tính sinh học là cần thiết. Trong nghiên cứu này, các phương pháp tiền xử lý bao gồm: dung dịch NaOH pH 8,5, 90oC, 2 phút; nước điện giải pH 8,5, 90oC, 2 phút; dung dịch NaOH pH 8,5, 90oC, 2 phút kết hợp với naringinase 3%, 50oC, 3 giờ; nước điện giải pH 8,5, 90oC, 2 phút kết hợp với naringinase 3%, 50oC, 3 giờ; kết hợp cellulase 10%, 50oC, 2 giờ và naringinase 3%, 50oC, 3 giờ; nước điện giải pH 8,5 kết hợp siêu âm 40kHz, 80oC, 2 phút; dung dịch NaCl 4% kết hợp siêu âm 40kHz, 80oC, 2 phút; cùng với mẫu đối chứng (không xử lý). Kết quả cho thấy tiền xử lý trong nước điện giải pH 8,5 kết hợp siêu âm 40kHz, 80oC, 2 phút giúp giảm naringin và duy trì hàm lượng hợp chất có hoạt tính sinh học ở mức cao.

Từ khóa
hạt tắc phụ phẩm tiền xử lý naringin hoạt tính sinh học

Tài liệu tham khảo

1.
Nguyễn Đức Tùng, Trần Hứa Hồng Nhạn, Nguyễn Việt Thuận, Nguyễn Thị Kiều Tiên, Trần Ngọc Nhã Trân và Tống Thị Ánh Ngọc (2023). Ảnh hưởng của loại hóa chất và phương pháp xử lý đến khả năng loại bỏ vị đắng vỏ cam sành (Citrus sinensis) bổ sung vào sản phẩm Marmalade. Tạp chí Khoa học Đại học Cần Thơ, 59(4), 155-163.
2.
Phan Thị Thanh Quế, Dương Kim Thanh, Lê Duy Nghĩa, Nguyễn Lâm Thảo Vy, Kha Chấn Tuyền, Nguyễn Văn Ây và Dương Thị Phượng Liên (2021). Ảnh hưởng của quá trình tiền xử lý đến chất lượng cam Sành (Citrus sinensis) sấy dẻo. Tạp chí Khoa học Đại học Cần Thơ, 57 (CĐ Công nghệ thực phẩm), 151-160.
3.
Andrade, M. A., Barbosa, C. H., Shah, M. A., Ahmad, N., Vilarinho, F., Khwaldia, K., ... & Ramos, F. (2022). Citrus by-products: Valuable source of bioactive compounds for food applications. Antioxidants, 12(1), 38.
4.
Bassey, E. J., Cheng, J. H., & Sun, D. W. (2022). Thermoultrasound and microwave-assisted freeze-thaw pretreatments for improving infrared drying and quality characteristics of red dragon fruit slices. Ultrasonics Sonochemistry, 91,106225.
5.
Bedawey, A. A. E., Mansour, E. H., Zaky, M. S. & Hassan, A. A. (2010). Characteristics of antioxidant isolated from some plant sources. Food and Nutrition Sciences, 01(01), 5-12.
6.
Cavia-Saiz, M., Busto, M. D., Pilar-Izquierdo, M. C., Ortega, N., Perez-Mateos, M., & Muñiz, P. (2010). Antioxidant properties, radical scavenging activity and biomolecule protection capacity of flavonoid naringenin and its glycoside naringin: a comparative study. Journal of the science of food and agriculture, 90(7), 1238-1244.
7.
Chen, R., Qi, Q. L., Wang, M. T., & Li, Q. Y. (2016). Therapeutic potential of naringin: an overview. Pharmaceutical biology, 54(12), 3203-3210.
8.
Dai, J., & Mumper, R. J. (2010). Plant phenolics: extraction, analysis and their antioxidant and anticancer properties. Molecules (Basel, Switzerland), 15(10), 7313-7352.
9.
Eyarkai Nambi, V., Gupta, R. K., Kumar, S., & Sharma, P. C. (2016). Degradation kinetics of bioactive components, antioxidant activity, colour and textural properties of selected vegetables during blanching. Journal of food science and technology, 53(7), 3073-3082.
10.
Friedman, M., & Jürgens, H. S. (2000). Effect of pH on the stability of plant phenolic compounds. Journal of agricultural and food chemistry, 48(6), 2101-2110.
11.
Kailaje, J., Chavan, R., & Annapure, U. (2025). Ultrasound assisted osmotic dehydration of sweet lime (Citrus limetta) slices: Process optimization and mass transfer kinetics. Food Chemistry, 467, 142350.
12.
Karneng, S. (2024). Determination of Total Flavonoid Contents of The Antioxidant Herbal Beverage Caesalpinia sappan L. Quantitatively Using the Calorimetry Methods of The AlCl3 Reaction That Forms Complex Compounds. Hayyan Journal, 1(1), 57-63.
13.
Li, M., Yi, Z., Shang, H., Zhu, C., & Huang, H. (2025). Biochemical mechanisms underlying the differences in fruit characteristics among three kumquat varieties. Frontiers in plant science, 16, 1640218.
14.
Liu, W., Mao, X., & Zhou, Z. (2022). Analysis of physicochemical properties, fatty acid composition and antioxidant activity of seed oil extracted from 12 citrus materials. International Journal of Food Science and Technology, 57(10), 6480-6491.
15.
Pękal, A., & Pyrzynska, K. (2014). Evaluation of aluminium complexation reaction for flavonoid content assay. Food Analytical Methods, 7, 1776-1782.
16.
Ribeiro M. H. (2011). Naringinases: occurrence, characteristics, and applications. Applied microbiology and biotechnology, 90(6), 1883-1895.
17.
Shen, N., Wang, T., Gan, Q., Liu, S., Wang, L., & Jin, B. (2022). Plant flavonoids: Classification, distribution, biosynthesis, and antioxidant activity. Food chemistry, 383, 132531.
18.
Yen, G. C., & Hung, C. Y. (2000). Effects of alkaline and heat treatment on antioxidative activity and total phenolics of extracts from Hsian-tsao (Mesona procumbens Hemsl.). Food Research International, 33(6), 487-492.
19.
Yu, J., Wang, L., Walzem, R. L., Miller, E. G., Pike, L. M., & Patil, B. S. (2005). Antioxidant activity of citrus limonoids, flavonoids, and coumarins. Journal of agricultural and food chemistry, 53(6), 2009-2014.
20.
Zhang, L., Zhang, R., Zhang, M., Xu, Z., Huang, F., Jia, X., ... & Deng, M. (2026). Optimization of multi-enzyme coupled debittering process: Effect on bitterness and bioactive components of Shatianyu (Citrus grandis L. Osbeck) whole fruit powder. Food Chemistry, 149066.