Ảnh hưởng của nhiệt độ sấy đến hàm lượng Chlorophyll và Saponin trong lá thù lù (Physalis Angulata L.)

Tóm tắt

Cây thù lù (Physalis angulata L.) là loại thảo dược mọc hoang dã ở các vùng nhiệt đới châu Mỹ, chứa nhiều hoạt chất sinh học. Nghiên cứu “Một số yếu tố ảnh hưởng đến hàm lượng chlorophyll và saponin trong bột lá thù lù (Physalis angulata L.) được tiến hành nhằm tạo ra sản phẩm mới có khả năng chống oxy hóa tốt, đảm bảo an toàn vệ sinh thực phẩm là điều quan trọng. Qua nghiên cứu khảo sát ảnh hưởng của nhiệt độ sấy (phơi nắng, 45, 55 và 65oC) cho thấy, khi sấy ở nhiệt độ 45oC đến độ ẩm dừng dưới 10% thu được hàm lượng chlorophyll là 0,67±0,02 mg/100g, saponin là 0,39±0,02 mg SE/g cao nhất và khả năng chống oxy hóa là 69,18±1,52 % tốt hơn so với các mẫu còn lại.

Từ khóa
lá thù lù bột sấy phun hợp chất sinh học khả năng chống oxy hóa

Tài liệu tham khảo

1.
Lê Anh Đức, Bùi Mạnh Tuân, Trần Văn Sen, Vũ Kế Hoạch. (2021). Nghiên cứu xác định phương pháp sấy và chế độ sấy rễ đinh lăng thái lát. Tạp chí Khoa học Công nghệ. 3, 59-65.
2.
Lê Ngọc Thụy (2009). Các quá trình công nghệ cơ bản trong sản xuất thực phẩm. Nhà xuất bản Bách khoa.
3.
Lê Văn Việt Mẫn, Lại Quốc Đạt, Nguyễn Thị Hiền, Tôn Nữ Minh Nguyệt và Trần Thị Thu Hà (2011). Công nghệ chế biến thực phẩm. Nhà xuất bản Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh.
4.
Nguyễn Lan Hương (2023). Tìm hiểu công dụng chữa bệnh của cây thù lù. Trường Đại học Lương Thế Vinh.
5.
Nguyễn Minh Chơn và Dương Duy Dương (2019). Ảnh hưởng ức chế của dịch trích cây lồng đèn (Physalis angulata L.) lên hoạt tính của α-amylase và α- glucosidase. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ. 55 (Số chuyên đề: Công nghệ Sinh học-2), 126-132.
6.
Nguyễn Thị Yến (2022). Nghiên cứu chế biến kẹo dẻo trái tầm bóp (Physalis angulate). Chuyên đề tốt nghiệp Đại học ngành Công nghệ thực phẩm, Trường Đại học An Giang.
7.
Al-tameemi, K., Nassour, R. and Hamad, A. (2022). The medical importance of chlorophylls and their derivatives. SEA Journal of Islamic Finance, 8, 4-8.
8.
AOAC International. (2019). Official methods of analysis (21st ed.).
9.
Berwal, M., Haldhar, S., Ram, C., Shil, S. and Gora, JS. (2021). Effect of extraction solvent on total phenolics, flavonoids and antioxidant capacity of flower bud and foliage of Calligonum polygonoides L. Indian Journal of Agricultural Biochemistry, 34, 61-67.
10.
Chizukho Yukizaki, Miho Sakai, Taeko Kosaka, Masumi Dozono (2008). Effects of drying temperature on antioxidant activity of lemon balm (melissa officinalis) leaves, 55(6), 293-298.
11.
Colho-Ferreira, M (2009). Medicinal knowledge and plant utilization in an Amazonian coastal community of Maruadá, Pará State (Brazil). J Ethnopharmacol, 126, 175-175.
12.
Elsa Rengifo and Gabriel Vargas-Arana (2013). Physalis angulata L. (Bolsa mullaca): A review of its traditional uses, chemistry and pharmacology. Bol Latinoam Caribe Plant Med Aromat, 12(5), 431-445.
13.
Fadhli, N. et al., (2023). Ciplukan (Physalis angulata L.): Review tanaman liar yang berpotensi sebagai tanaman obat. Jurnal Farmasi Indonesia, 15(2), 133-145.
14.
Gao Shanlin & Wang Hong (2001). Technique on Extraction and content determination of saponin from Momordica Grosvenori, Natural Product Rearch and Developmen, 13(2), 36-40.
15.
Geissler, P., Harris, S., Prince, R, Olsen, A., Odhiamo, R., Oketch-Rabah, H., Madiega, P., Andersen, A. and Molgaard, P. (2002). Medicinal plants used by Luo mothers and children in Bonde district, Kenya. J Ethnopharmacol, 83(1-2), 39-54.
16.
Kedare, S. B., & Singh, R. P. (2011). Genesis and development of DPPH method of antioxidant assay. Journal of Food Science and Technology, 48(4), 412-422. https://doi.org/10.1007/s13197-011-0251-1
17.
Liu, S. C., Lin, J. T., Wang, C. K., Chen, H. Y., & Yang, D. J. (2011). Antioxidant properties of various solvent extracts from lychee (Litchi chinensis Sonn.) flowers. Food Chemistry, 114, 577-581.
18.
Potisate, Y. & Phuongchandang, S. (2010). Chlorophyll retention and drying characteristics of Ivy gourd leaf (Coccinia grandis Voigt) using tray and heat pump–assisted dehumidified air drying. Drying Technology, 28, 786-797.
19.
Souza, JNS., Silva, EM., Loir, A., Rees, J-F., Rogez, H. and Larondelle, Y. (2008). Antioxidant capacity of four polyphenol-rich Amazonian plant extracts: A correlation study using chemical and biological in vitro assays. Food Chemistry, 106(1), 331-339.
20.
Wojdyło, A., Nowicka, P., Tkacz, K., Turkiewicz, I.P. (2020). Sprouts vs. microgreens as novel functional foods: variation of nutritional and phytochemical profiles and their in vitro bioactive properties. Molecules, 25(20), 4648.