Issue: Số 8 - Tháng 4 - 2022Hóa học - Công nghệ thực phẩm
Tối ưu hóa khả năng ức chế enzyme α-glucosidase trong dịch chiết của Polygonum barbatum L.
Published: July 30, 2026
Abstract
Mục tiêu của nghiên cứu này là tối ưu hóa các điều kiện chiết xuất của cây P. barbatum để tối đa khả năng ức chế α-glucosidase. Có 4 yếu tố được khảo sát, bao gồm: nồng độ etanol (30, 50, 70, 100%), nhiệt độ chiết (40, 50, 60, 70°C), thời gian chiết (30, 45, 60, 90 phút) và tỷ lệ rắn trên dung môi (1:5, 1:10, 1:15 và 1:20 g:mL). Kết quả cho thấy điều kiện chiết xuất thích hợp cho khả năng ức chế α-glucosidase tốt nhất ở nồng độ ethanol 70%, nhiệt độ chiết 60°C, thời gian chiết 60 phút, và tỷ lệ rắn trên dung môi là 1:10 g:mL. Chiết xuất tối ưu thể hiện hoạt động ức chế α-glucosidase tốt với nồng độ ức chế IC50 là 0,45 µg/mL, hoạt tính kháng oxy hóa với IC50 là 6,87 µg/mL và hoạt tính chống viêm với IC20 là 4,75 µg/mL. Các kết quả cho thấy chiết xuất có tiềm năng điều trị bệnh tiểu đường.
N. Tran et al. (2020). Bioactive compounds in anti-diabetic plants: From herbal medicine to modern drug discovery. Biology, 9(9), 252.
2.
T. M. Le et al. (2021). Combination of Phyllanthus amarus Schum. & Thonn. and Gymnema sylvestre R. Br. for treatment of diabetes and its long-term complications. Fine Chemical Technologies, 16(3), 232-240.
3.
A. Kumar et al. (2019). Ethnomedicinal investigation of medicinal plants of Chakrata region (Uttarakhand) used in the traditional medicine for diabetes by Jaunsari tribe. Natural Products and Bioprospecting, 9(3), 175-200.
4.
S. Edwards et al. (2012). Use and efficacy of herbal medicines: Part 1-Historical and traditional use. Pharmaceutical Journal, 289(7717), 161-162.
5.
H.-Y. Hung et al. (2012). Recent discovery of plant-derived anti-diabetic natural products. Natural Product Reports, 29(5), 580-606.
6.
M. A. Mazid et al. (2011). Phytochemical studies on Polygonum barbatum (L.) Hara var. barbata (Polygonaceae). Records of Natural Products, 5(2), 143.
7.
A. Sanchez et al. (2008). Phylogenetics of Polygonaceae with an emphasis on the evolution of Eriogonoideae. Systematic Botany, 33(1), 87-96.
8.
A. Ramani (2011). In-vitro antioxidant activity of Polygonum barbatum leaf extract. Asian Journal of Pharmaceutical and Clinical Research, 4(1), 113-115.
9.
M. A. Mazid et al. (2009). Antinociceptive, anti-inflammatory and diuretic properties of Polygonum barbatum (L.) Hara var. barbata. Revista Brasileira de Farmacognosia, 19(3), 749-754.
10.
N. H. N. Do et al. (2020). Optimization of total flavonoid content of ethanolic extract of Persicaria pulchra (Bl.) Soják for the inhibition of α-glucosidase enzyme. Fine Chemical Technologies, 15(4), 39-50.
11.
F. Liu et al. (2018). Phenolics from Eugenia jambolana seeds with advanced glycation endproduct formation and alpha-glucosidase inhibitory activities. Food and Function, 9(8), 4246-4254.
12.
D. Stagos (2020). Antioxidant activity of polyphenolic plant extracts. Switzer: Multidisciplinary Digital Publishing Institute.
13.
R. S. B. Eshwarappa et al. (2016). Anti-Lipoxygenase activity of leaf gall extracts of Terminalia chebula (Gaertn.) Retz. (Combretaceae). Pharmacognosy Research, 8(1), 78.
14.
B. K. Pedersen (2017). Anti-inflammatory effects of exercise: role in diabetes and cardiovascular disease. European Journal of Clinical Investigation, 47(8), 600-611.
15.
L. A. D. Williams et al. (2008). The in vitro anti-denaturation effects induced by natural products and nonsteroidal compounds in heat treated (immunogenic) bovine serum albumin is proposed as a screening assay for the detection of anti-inflammatory compounds, without the use of animals. West Indian Medical Journal, 57(4).
